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低速离心能否分离血细胞和血浆?

血液是人体内最常见的循环组织,主要由血浆和血细胞两部分组成,其中血浆含有水分、电解质、蛋白质及各类小分子物质,血细胞则包括红细胞、白细胞和血小板。实验室中,往往需要将血液中的血细胞与血浆分离,以便对血浆成分进行生化检测或对细胞进行形态学、免疫学分析。低速离心作为常见的分离手段,以其操作简便、对细胞损伤较小和成本低廉的优点,成为血细胞与血浆初步分离的首选方法。本文将系统探讨低速离心分离血细胞和血浆的可行性、影响因素、操作要点及常见问题的解决方案,为实验室准确、高效地开展血液分离提供参考。

一、前言
血液是人体内最常见的循环组织,主要由血浆和血细胞两部分组成,其中血浆含有水分、电解质、蛋白质及各类小分子物质,血细胞则包括红细胞、白细胞和血小板。实验室中,往往需要将血液中的血细胞与血浆分离,以便对血浆成分进行生化检测或对细胞进行形态学、免疫学分析。低速离心作为常见的分离手段,以其操作简便、对细胞损伤较小和成本低廉的优点,成为血细胞与血浆初步分离的首选方法。本文将系统探讨低速离心分离血细胞和血浆的可行性、影响因素、操作要点及常见问题的解决方案,为实验室准确、高效地开展血液分离提供参考。

二、血液成分与分离需求

  1. 血浆(Plasma)

    • 组成:约占全血体积的55%~60%,主要是水(≈90%)、白蛋白、球蛋白、纤维蛋白原及电解质、激素和代谢产物等。

    • 应用:血浆可用于肝肾功能检测、电解质测定、血清学实验等。

  2. 血细胞(Cellular components)

    • 红细胞:约占全血的40%~45%,负责携氧和输送二氧化碳;

    • 白细胞:参与机体免疫防御;

    • 血小板:在止血和凝血过程中发挥关键作用。

  3. 分离目的

    • 上清回收:获取无细胞的血浆;

    • 沉淀收集:保留细胞进行计数、形态学观察或功能学研究。

三、低速离心分离原理
血液在离心力场中分层是基于各组分密度和颗粒大小的差异。相对离心力(RCF)与转速平方成正比,与转子半径成正比,计算公式:

RCF=1.118×10−5×r(cm)×(rpm)2RCF = 1.118\times10^{-5}\times r(\mathrm{cm})\times (\mathrm{rpm})^2RCF=1.118×105×r(cm)×(rpm)2

在低速条件下(一般为800–1 500 g,对应约2 000–4 000 rpm),红细胞密度最大(≈1.09 g/mL)最先沉降;血小板和白细胞随后聚集于红细胞界面;血浆密度最小(≈1.03 g/mL)则留在上层。通过控制转速、时间以及温度,可实现血浆层与细胞层的清晰分离。

四、离心参数优化

  1. 转速(rpm)

    • 红细胞与血浆初步分离常选1 200–1 500 rpm;

    • 若需更彻底除去细胞碎片,可适当提高至1 800 rpm。

  2. 时间(min)

    • 标准血浆分离:5–10 分钟;

    • 富血小板血浆(PRP)制备:短时(3–5 min)中速(1 500–2 000 rpm)以避免血小板激活。

  3. 温度(℃)

    • 室温(20–25 ℃)一般适用;

    • 对温度敏感样本可使用4 ℃冷藏离心。

  4. 转子类型

    • 固定角度转子:沉淀紧凑,适用于大批量快速分离;

    • 摆动转子:沉淀平坦,易于分层吸取,适合精细分离。

五、标准操作流程

  1. 采血:使用抗凝管(如EDTA、肝素管),轻柔颠倒混匀数次,避免剧烈摇晃产生气泡。

  2. 预平衡:离心管配对放置,单根管重量差不超过0.05 g,必要时用等体积生理盐水对称平衡。

  3. 离心:设定参数(如1 500 rpm×8 min×室温),启动时先低速加速预转,再平稳运行。

  4. 回收血浆:离心结束后轻轻取出管内上层血浆,避免扰动细胞层,使用移液器或枪头切角取样。

  5. 二次清澈(可选):若血浆仍含少量细胞碎片,可对上清进行短时二次离心(1 000 rpm×3 min),获得更澄清样品。

  6. 样品保存:血浆分装于新管,根据实验需求可−20 ℃或−80 ℃保存;细胞沉淀用于计数或下游分析。

六、影响分离效率的关键因素

  1. 抗凝剂类型:不同抗凝剂对血小板活化及细胞聚集影响不同,应根据实验目的慎选。

  2. 样本体积与管径:管内样本量不宜超过管体容积的2/3,以保证离心效果;使用兼容转子的管径适配器。

  3. 离心回程与减速曲线:快速停止易导致沉淀扰动;使用缓冲减速功能,可保持层次清晰。

  4. 样本状态:老化血样或倾斜放置采血管会导致细胞预沉降,影响分层质量。

七、常见问题及应对措施

  1. 血浆混浊:可能因血小板或细胞残留,可增加离心时间或进行二次缓速离心;

  2. 沉淀不紧凑:检查转速是否足够或平衡是否准确;

  3. 管壁细胞粘附:清洗后用少量PBS冲洗,再离心回收;

  4. 血小板活化:选择低温离心并缩短时间,或添加PGI₂脱活剂。

八、应用示例
某科研团队需分离小鼠眼眶采集的全血以获得高质量血浆用于ELISA检测。实验使用1.5 mL EDTA管,设定离心参数为1 200 rpm×10 min×4 ℃,采用摆动转子。离心后上清清澈无颗粒,经二次1 000 rpm×5 min处理后,血浆澄清度满足下游高灵敏度蛋白测定要求,且血浆量回收率达90%以上。

九、注意事项与安全规范

  1. 必须严格校准离心机,定期检测转速误差;

  2. 离心过程中严禁打开腔门;

  3. 离心管如有裂纹或刮痕,应及时更换;

  4. 操作环境保持清洁,定期对转子和腔体进行中性清洗与消毒;

  5. 采血后尽快离心,避免细胞裂解影响结果。

十、结语
低速离心通过差速沉降原理,可高效、温和地将血细胞与血浆分离,为临床检验与科研提供了可靠手段。通过合理选择离心参数、维护设备性能并严格执行操作流程,能够在保证样本活性和完整性的前提下,获得高质量的血浆与细胞沉淀。未来,随着自动化离心设备和智能控制技术的普及,低速离心分离的精度与效率将进一步提升,为生命科学研究和医学诊断带来更多便利。