
紫外分光光度计可用于蛋白质测定吗?
1. 引言
蛋白定量是实验室日常操作中极为常见的实验内容。传统蛋白浓度测定方法包括:
紫外吸收法(UV法)
比色法(如Bradford、BCA、Lowry法)
荧光法
质谱法
其中,紫外分光光度法因其简便性与实时性,在实验前期快速定量、粗定量监控、自动化流程中应用广泛,是蛋白浓度测定体系的重要组成部分。
2. 紫外分光光度计测定蛋白质浓度的原理
2.1 吸光机理
紫外吸收主要来源于蛋白质分子中的芳香族氨基酸残基:
氨基酸 | λmax (nm) | 吸光强度 |
---|---|---|
色氨酸(Trp) | 280 | 强吸收 |
酪氨酸(Tyr) | 280 | 中等吸收 |
苯丙氨酸(Phe) | 257 | 弱吸收 |
此外,肽键主链在205~220 nm 也产生一定吸收。
2.2 朗伯-比尔定律
A=ε⋅c⋅lA = \varepsilon \cdot c \cdot lA=ε⋅c⋅l
其中:
A:吸光度;
ε:摩尔吸光系数;
c:蛋白浓度;
l:比色池光程(通常1 cm)。
2.3 核心波长选择
280 nm:适合大部分蛋白质;
205 nm:更高灵敏度,但干扰更多。
3. UV法蛋白定量的两大技术路径
3.1 A280法(标准紫外吸收法)
原理
主要基于Trp和Tyr的吸收;
蛋白质本身直接吸收紫外光,无需添加试剂;
适用于高纯度蛋白。
浓度计算公式
C(mg/mL)=A280ε×MWC (mg/mL) = \frac{A_{280}}{\varepsilon} \times MWC(mg/mL)=εA280×MW
ε:摩尔吸收系数(L/mol·cm);
MW:蛋白分子量。
适用对象
重组蛋白、抗体、酶制剂等高纯样品;
单一蛋白分析。
3.2 A205法(肽键吸收法)
原理
所有蛋白质的肽键在205 nm 有强烈吸收;
不依赖于Trp和Tyr含量;
灵敏度高,但对缓冲液干扰非常敏感。
经验换算
C(mg/mL)=A20531C (mg/mL) = \frac{A_{205}}{31}C(mg/mL)=31A205
适用对象
低芳香残基含量蛋白;
微量高纯蛋白定量。
4. UV法蛋白定量的应用场景
应用领域 | 检测目的 |
---|---|
分子生物学 | 蛋白提取浓度估算 |
重组表达体系 | 蛋白产量监测 |
酶活测定 | 计算单位活性 |
生物制药 | 抗体制剂浓度控制 |
临床医学 | 血清总蛋白检测 |
食品工业 | 蛋白强化食品含量监控 |
生物反应器 | 实时在线质量监控 |
5. UV法蛋白定量的操作流程
5.1 样品准备
澄清、透明、无沉淀;
必要时稀释至吸光度在0.2~1.0范围内;
避免气泡形成。
5.2 仪器设置
选择适当检测波长(280 nm或205 nm);
石英比色皿(标准光程1 cm);
空白溶液为缓冲液体系。
5.3 测定步骤
仪器预热稳定;
用空白液调零;
测定样品吸光度;
按公式计算浓度;
必要时参考标准曲线校正。
6. UV法蛋白定量与比色法的对比
项目 | UV法 | 比色法(如Bradford法) |
---|---|---|
灵敏度 | 中等(>0.1 mg/mL) | 高(μg/mL级) |
线性范围 | 窄 | 宽 |
操作简便性 | 极高 | 需试剂准备 |
试剂成本 | 低 | 高 |
适用样品 | 高纯蛋白 | 复杂混合体系 |
结果重复性 | 稳定 | 易受试剂影响 |
缓冲液干扰 | 明显 | 相对较小 |
结论:UV法适合高纯样品快速定量,复杂体系推荐比色法。
7. UV法蛋白定量的常见干扰因素
干扰来源 | 影响表现 | 解决措施 |
---|---|---|
缓冲液吸收 | 偏高背景A值 | 空白液需统一缓冲体系 |
核酸污染 | A260吸收重叠 | A260/A280比值监控 |
色素污染 | A280异常升高 | 去除酚类杂质 |
比色皿污染 | 不稳定吸光度 | 定期清洁、检测空白稳定性 |
pH变化 | 电离状态吸光漂移 | 统一缓冲条件 |
8. UV法蛋白浓度的纯度评估
8.1 A260/A280比值
纯蛋白:A260/A280≈0.55;
高于0.6:提示核酸污染;
低于0.5:可能存在色素或表面活性剂干扰。
8.2 双波长修正计算
修正公式:
A280,corrected=A280−(A260×0.57)A_{280, corrected} = A_{280} - (A_{260} \times 0.57)A280,corrected=A280−(A260×0.57)
可部分修正核酸污染影响,提高定量准确性。
9. UV法蛋白定量的标准曲线建立
虽然紫外法可以直接计算蛋白浓度,但标准曲线法仍广泛用于以下场景:
蛋白混合物总量估算;
无法准确获得ε值时;
适用于血清、牛奶、复合制剂等复杂样品;
以牛血清白蛋白(BSA)作为常用标准品。
10. UV法蛋白定量的高阶优化技术
10.1 微量UV检测平台
微光程平台(如NanoDrop);
仅需1~2 μL样品;
适合高价值、稀有样本分析。
10.2 多波长同步分析
同时采集多波长数据;
通过算法修正重叠干扰;
增强复杂体系定量准确性。
10.3 导数光谱法
增强小吸收峰差异识别;
提高重叠峰分辨能力;
对色素干扰抵抗力更强。
10.4 多元线性回归模型
利用全谱数据;
数学建模拟合蛋白浓度;
提高多组分体系分析能力。
11. 紫外分光光度计蛋白定量仪器配置建议
12. UV法蛋白定量在生产与科研中的典型应用
应用场景 | 检测目的 |
---|---|
蛋白纯化工艺监控 | 动态监测各纯化步骤得率 |
重组蛋白生产 | 表达量监控、批次一致性控制 |
抗体制剂研发 | 制剂装量确认与稳定性监测 |
蛋白疫苗制备 | 质量控制与纯度评估 |
临床血清学研究 | 总蛋白含量定量与疾病诊断参考 |
食品蛋白质强化 | 营养强化蛋白质总量检测 |
13. UV法蛋白定量未来技术发展趋势
13.1 智能定量算法
AI训练蛋白序列-ε值预测模型;
快速定量无需单独标准曲线;
提高新型蛋白分析通用性。
13.2 在线实时监控系统
紫外法嵌入生物反应器在线采样系统;
实现实时浓度反馈调控生产过程;
应用于生物制药连续制造技术。
13.3 联合多模态检测平台
UV-荧光同步定量;
UV-色谱联用分析纯度与定量同步输出;
UV-质谱系统集成提供全面蛋白质量表征。
13.4 微量无损检测集成
14. 结语
紫外分光光度计在蛋白浓度测定中,凭借其快捷、经济、普适的优势,在科研实验、生产控制、临床检验与质量管理体系中发挥着基础性与支撑性作用。UV法适用于绝大多数高纯度蛋白样品的日常快速定量需求,同时通过技术创新不断扩展其适用范围与分析深度。未来,随着AI算法、在线监控、微量检测与多模式融合技术的发展,紫外法将在蛋白分析领域持续发挥重要作用,助力生命科学技术平台的不断升级与突破。
