
紫外分光光度计可用于蛋白质测定吗?
一、紫外吸收机理:为什么蛋白质“看得见”
芳香族残基吸收
色氨酸 (Trp):λ_max≈ 280–282 nm,ε≈ 5 500 L mol⁻¹ cm⁻¹
酪氨酸 (Tyr):λ_max≈ 274–276 nm,ε≈ 1 440
苯丙氨酸 (Phe):λ_max≈ 257 nm,ε≈ 200
肽键吸收
n → π* 跃迁,λ≈ 190–205 nm,ε≈ 10 000(但溶剂与杂质易干扰)
二硫键/金属配合吸收
提供次要吸收带,与折叠状态相关,可用于质构监测
朗伯–比耳定律
A=εclA=\varepsilon c lA=εcl
在 0.05 ≤ A ≤ 1.2 区间近似线性,光程 l 可为 1 cm(常规)或 0.05–0.2 mm(微量平台)。
**简言之:**只要配方里有 Trp/Tyr(大部分蛋白如此),280 nm 就能测得可量化的光吸收;没有芳香残基时,可用 205 nm 补位。
二、三套定量路线:从速测到精测
1. 280 nm 直接法(最常用)
适用对象 | 优点 | 局限 |
---|---|---|
绝大多数含 Trp/Tyr 蛋白 | 无化学反应,30 s 内出结果 | 缺乏 Trp/Tyr 的胶原、明胶及小肽测值偏低 |
经验转换系数
C(mg mL−1)=A280ε1%280C(\text{mg mL}^{-1})=\frac{A_{280}}{\varepsilon_{1\%}^{280}}C(mg mL−1)=ε1%280A280
其中 ε₁%^{280} 为“1 mg mL⁻¹ 时,1 cm 光程下的吸光度”,可用序列推算或文献查表。
2. 205 nm 全肽键法(无芳香残基首选)
公式 (Scopes)
C(mg mL−1)=A20531C(\text{mg mL}^{-1}) = \frac{A_{205}}{31}C(mg mL−1)=31A205
优势:对胶原蛋白、多肽水解液等低芳香族样本同样敏感;
要点:需要石英比色器,且溶剂必须无深紫外吸收(如硫酸铵必须稀释)。
3. 双波长/差示法(蛋白-核酸混杂体系)
两条方程
{A280=1.55 CProt+0.76 CDNAA260=0.27 CProt+1.00 CDNA\begin{cases} A_{280}=1.55\,C_{\text{Prot}}+0.76\,C_{\text{DNA}}\\ A_{260}=0.27\,C_{\text{Prot}}+1.00\,C_{\text{DNA}} \end{cases}{A280=1.55CProt+0.76CDNAA260=0.27CProt+1.00CDNA
用途:分子克隆、质粒纯化时可一次读出DNA与蛋白两浓度。
实现:代入实测 A₂₈₀、A₂₆₀ 求解二元线性方程即可。
三、样品前处理与光程选择
样品 | 光程 / 器皿 | 典型稀释 | 特殊操作 |
---|---|---|---|
发酵液上清 | 10 mm 石英槽 | 20×–100× | 0.22 µm 过滤,去散射 |
高浓度抗体原液 | 0.1 mm 微量槽 | 无需稀释 | 去气泡 / 温控 25 ℃ |
口红配方蛋白 | 石英比色+乙醇萃取 | 5×–10× | 去脂+离心除蜡 |
胶原水解液 | 1 mm 半微槽(205 nm) | 2×–5× | 比色皿用新鲜酸洗 |
精髓:让 A 落入“线性甜区”并把散射、浊度、色度降至最低。光程短、样量少、结果更稳。
四、质量控制:5 + 1 标准
指标 | 要求 | 核心检点 |
---|---|---|
线性 | R² ≥ 0.998 | 标曲至少 5 点,跨度 20–120 % |
精密度 | RSD ≤ 2 % | 同一样品 6 读 |
准确度 | 回收率 95–105 % | 加标三水平 |
特异性 | A_blank ≤ 0.01 | 缓冲与溶剂匹配 |
稳定性 | 2 h 偏差 ≤ 3 % | 避光、恒温 |
波长校验(+1) | K₂Cr₂O₇ 257/313 nm 比值合格 | 每周一次 |
五、与经典比色法的正面对比
维度 | UV-直读 | Bradford | BCA | Lowry |
---|---|---|---|---|
测试时间 | 0.5 min | 25 min | 30 min | 90 min |
样品消耗 | 1–2 µL(微槽) | 200 µL | 200 µL | 200 µL |
试剂成本 | 无 | ★ | ★★ | ★★ |
染料残留 | 无 | 有 | Cu²⁺残留 | 重金属残留 |
动态范围 | 0.02–200 mg mL⁻¹ | 1–2 000 µg mL⁻¹ | 20–2 000 | 50–1 500 |
干扰因子 | 核酸、盐、缓冲 | 去垢剂敏感 | 还原剂敏感 | 酚敏感 |
**结论:**日常高通量快检 → 用 UV;痕量检测或缺芳香残基 → 补用 BCA/Bradford。两者合用可覆盖从 µg mL⁻¹ 到 百 mg mL⁻¹ 全范围。
六、数据异常与补救清单
症状 | 判定 | 应急方案 |
---|---|---|
A₂₈₀ > 1.5,曲线平顶 | 浓度过高 | 稀释 5–20× 或换 0.1 mm 光程 |
A₂₆₀/A₂₈₀ > 0.7 | 核酸混杂 | 加 DNase/RNase 消化后重测 |
A₂₆₀/A₂₈₀ < 0.5 | 酚/色素引入 | 酚/氯仿抽提或活性炭吸附 |
全谱尾拖长 | 微粒散射 | 过滤/离心或加 0.05 % Tween-20 |
测值随机漂 | 比色窗留残 | 70 % 乙醇+无尘纸彻底擦拭 |
七、紫外法的“进阶玩法”
动态检测折叠/展开
变性剂梯度(6 M GuHCl→0)实时记录 280 nm,可绘 Tm 曲线。
Stopped-Flow UV
监测酶‐配体快速结合(ms 级)中的色氨酸荧熄或 λ 移。
在线光纤探头
发酵罐出口安装 280 nm 探头,配 PID 曲线实时调节补料。
深紫外圆二色
同步测吸光 + 二级结构,用于蛋白药质控。
AI‐Denoise
深度网络自动剔除散射与噪声,低浓样本 S/N 提升 3-5 倍。
八、未来技术坐标
技术 | 关键突破 | 应用场景 |
---|---|---|
MEMS-UV 芯片 | 深紫外 LED + 微光栅 | 手持快检,高通量 QC |
微流控前处理 | 集成稀释、过滤、光程可调 | 连续制造产线 |
云端光谱数据库 | 万级蛋白 ε 值与全谱指纹 | 字典式比对、一键溯源 |
AI 反演模型 | 全谱 → 浓度 + 高阶结构预测 | 疫苗与单抗结构监测 |
九、结语
能测吗? 当然能。80 % 以上的蛋白质含 Trp/Tyr,可直接以 280 nm 读数乘“经验系数”定量。
准不准? 通过光程匹配、稀释线性、比值监控和杂质排查,可把变异压到 ±2 %。
值不值? 对于需要 “秒级反馈”“微量损耗”“在线闭环” 的场景,UV‐直读法拥有不可替代的高性价比;与比色法、质谱法互补,可覆盖全浓度范围与质量维度。
紫外分光光度计虽老,但在 MEMS、智能算法与物联网的加持下,正快速升级为智慧生物制造与实验室自动化体系中的“一线哨兵”。熟练掌握其机理与操作细节,便能在蛋白质分析的竞赛中跑赢时间与成本。
