赛默飞细胞计数仪Invitrogen Countess 3 Automated Cell Counter成像系统
质保3年只换不修,厂家长沙实了个验仪器制造有限公司
一、引言
赛默飞Invitrogen Countess 3 自动细胞计数仪是一款集光学显微成像、图像识别算法与数据分析于一体的高性能细胞检测设备。其核心技术之一即为成像系统(Imaging System),该系统决定了仪器的图像清晰度、识别精度及分析速度。
Countess 3的成像系统融合了高分辨率光学镜头、精密照明结构、先进的数字图像传感器以及智能图像处理算法。通过光学设计与电子成像技术的紧密结合,仪器能够在极短时间内完成样品成像、聚焦、识别与数据计算,从而实现自动化、高通量、无偏差的细胞计数与活性分析。
二、成像系统总体结构
Countess 3的成像系统由以下四个核心模块组成:
光学显微镜模块:用于样品放大与成像;
照明与光路系统:提供稳定、均匀的光源;
图像采集与传感模块:将光学图像转换为数字信号;
图像分析与处理系统:执行聚焦优化、边缘识别与活死细胞分类。
整个系统通过精密的机械对准与自动控制算法协调运行,实现快速自动聚焦与高精度捕获图像。
三、光学显微镜模块
1. 光学结构设计
Countess 3采用高品质显微成像光路,内置10×等效放大倍率的光学镜头系统。光学结构包括物镜组、对中透镜、成像镜与传感器耦合透镜等部分。该系统在光路设计中引入低畸变光学玻璃,以消除像差和边缘失真,保证整个视野范围内亮度与清晰度均匀。
2. 分辨率性能
光学分辨率:可清晰分辨≥5 μm的细胞结构;
视场范围:单次成像面积约2 mm × 2 mm;
像场平坦度:边缘亮度衰减小于5%;
焦深范围:约±20 μm,满足悬浮细胞的成像需求。
3. 光学对准
镜头组件经过工厂级光轴校准,保证光路同轴度误差小于0.05°。光学路径通过固定支架设计实现长期稳定性,即使在运输或长期使用后仍能保持高对准精度。
4. 防反射与防污染设计
所有镜头表面均采用多层镀膜技术,有效减少反射与散射光干扰。光学腔体采用密封结构,防止灰尘和水汽进入,确保成像系统长期稳定。
四、照明与光路系统
1. 照明光源
Countess 3采用高亮度、低功耗LED光源,提供稳定均匀的照明条件。
光源类型:白光LED(明场)与多通道荧光LED(Fluorescence版本);
光谱范围:400–700 nm;
光源寿命:大于20,000小时;
亮度稳定性:波动小于±2%。
LED光源相较传统卤素灯具有能耗低、热量少、寿命长等优点,能在长时间运行下保持光强稳定,避免对细胞样品造成热影响。
2. 照明均匀化设计
光路中配置菲涅尔透镜与漫射片,形成均匀照明面。系统通过光学积分机制使照射光强在整个成像区域内均匀分布,亮度差异小于5%,避免中心与边缘光强不一致造成的识别误差。
3. 光路构成
光路采用透射式成像方式。光线自LED光源发出,经准直透镜与漫射片整形后穿透样品,再经物镜聚焦投射至成像传感器。
荧光版本则增加激发光与发射滤光片组,通过多通道切换实现不同荧光信号的检测。每个滤光通道均经过精密光谱校准,确保不同波段信号分离准确。
五、图像传感器与信号采集
1. 传感器类型
仪器内置高灵敏度CMOS图像传感器(Complementary Metal Oxide Semiconductor),该传感器具有高分辨率、低噪声与高速读取的特点,适合动态范围广的生物样品成像。
2. 主要参数
有效像素:约300万(2048 × 1536);
像素尺寸:3.45 μm × 3.45 μm;
信噪比(SNR):≥40 dB;
动态范围:12-bit灰度深度;
采样速率:≥60帧/秒;
光谱响应范围:400–700 nm,适合明场与荧光双模式检测。
3. 数字化过程
CMOS传感器将入射光信号转换为电荷信号,随后通过模数转换器(ADC)转化为数字图像数据。系统对信号进行伽玛校正、平场补偿与像素均衡,以提高整体对比度与清晰度。
4. 噪声抑制与温度控制
传感器内部设计有低噪声放大器与温度补偿模块,可有效降低暗电流与热噪声。即使长时间连续检测,也能保持信号稳定性。
六、自动聚焦系统
1. 原理概述
Countess 3具备智能自动聚焦(Auto Focus)功能。该系统通过扫描不同焦距下的图像清晰度,计算对比度函数(如Laplacian方差或Tenengrad算法),选取清晰度最大点作为最优焦平面。
2. 聚焦机制
自动聚焦机构由步进电机驱动,镜头沿Z轴微调位移,每次调整步长约1 μm。系统通过算法实时反馈焦点位置,实现毫秒级聚焦响应。
3. 聚焦精度
重复定位精度:±1 μm;
聚焦时间:小于3秒;
稳定性:重复聚焦100次偏差小于2 μm。
4. 手动微调模式
在特殊样品(如颗粒较大或背景复杂)下,可使用手动调焦功能,通过触控滑条微调焦距,确保图像最清晰。
七、图像采集与处理系统
1. 图像采集流程
光源照射样品;
光信号通过物镜聚焦形成影像;
CMOS传感器采集影像并生成数字信号;
软件对图像进行预处理(降噪、增强、对比度调整);
算法模块执行识别与计数分析。
整个流程自动完成,全程无需人工干预。
2. 图像预处理算法
去噪处理:采用中值滤波与高通滤波相结合方式;
背景扣除:去除非均匀照明导致的背景偏差;
亮度均衡:动态调整灰度范围以增强边缘对比度;
形态学运算:用于去除杂质与伪影。
3. 图像识别与分割
AI算法通过细胞的灰度、圆度、边缘特征识别单个细胞,并利用分水岭算法分离聚团细胞。系统可自动剔除非细胞对象(如碎片或气泡),提高计数准确性。
八、荧光成像系统(Countess 3 FL版本)
1. 光路结构
荧光成像系统采用独立的激发光源与发射检测路径。每个通道包括LED光源、激发滤光片、二向色镜与发射滤光片。
激发波段:DAPI(358 nm)、GFP(488 nm)、RFP(555 nm);
发射波段:DAPI(461 nm)、GFP(509 nm)、RFP(584 nm);
切换方式:电子自动切换或软件控制。
2. 成像性能
荧光分辨率:可检测低至10⁻⁶ mol/L的荧光信号;
信号线性度:偏差小于5%;
信号背景比(S/B):>100;
曝光时间:0.5–1000 ms自动调节。
3. 应用功能
荧光成像不仅可用于识别转染细胞比例、蛋白表达量,还可用于检测细胞凋亡、活性荧光染料标记及多色分析实验。
九、成像校准与质量控制
1. 校准目的
成像校准用于确保光学放大倍率、亮度分布与像素比例的准确一致。长期使用后,由于光源老化或镜头偏移,需定期校准以维持性能。
2. 校准流程
使用10 μm标准微球进行视场尺寸校正;
拍摄标准灰阶图像检测亮度均匀性;
系统自动生成校准系数并存储;
校准后运行测试样品验证精度。
3. 校准频率
建议每6个月或累计使用1000次后执行一次完整校准;若更换光源、镜头或传感器,应立即重新校准。
十、图像输出与显示系统
1. 图像显示
显示屏:7英寸电容触控屏,分辨率1024×600;
图像输出格式:JPEG、TIFF;
放大缩放:支持1×–4×数字放大;
对比度调节:自动与手动两种模式;
伪彩显示:用于荧光信号分层可视化。
2. 数据输出
图像及分析结果可导出为PDF或CSV文件,并可通过USB或网络传输至外部系统。用户可保存原始图像以便后期分析。
3. 多样本比较
系统支持图像并列对比功能,可在屏幕上同时显示不同样本的成像结果,方便进行形态差异分析与结果复核。
十一、成像系统性能优势
高分辨率成像:精确识别小至4 μm细胞,边界清晰;
自动曝光与聚焦:全程智能控制,提高通量与重复性;
高稳定性光源:LED照明无闪烁、低热量;
AI辅助识别:结合深度学习算法提升图像判读精度;
多模式兼容:支持明场与荧光模式切换;
低噪声成像:CMOS传感器配合算法降噪,图像信噪比高;
实时分析:图像捕获后即时生成结果,无需离线处理。
十二、常见成像问题与解决措施
| 问题现象 | 可能原因 | 解决方案 |
|---|---|---|
| 图像模糊 | 焦距偏移或窗口污染 | 重新聚焦并清洁光学窗口 |
| 图像亮度不均 | 光源老化或漫射片污染 | 清洁或更换光源组件 |
| 图像出现斑点 | 样品气泡或灰尘干扰 | 重新制样并清洁载片 |
| 荧光信号过饱和 | 曝光时间过长 | 缩短曝光或降低增益 |
| 成像延迟 | 系统缓存过满 | 清理历史数据并重启系统 |
十三、系统维护建议
定期清洁镜头、照明窗口与载片槽;
每半年检测光源亮度并记录衰减情况;
定期执行自动聚焦与光学校准;
禁止在成像过程中移动仪器;
使用防尘罩覆盖仪器防止外部灰尘进入;
若图像信号持续异常,应联系专业维护工程师。
十四、成像系统应用扩展
Countess 3成像系统不仅应用于基础细胞计数,还可扩展至以下领域:
细胞形态学研究:利用图像边缘参数分析细胞形态变化;
药物作用机制研究:通过荧光信号变化评估药物对细胞活性的影响;
干细胞分化分析:基于细胞大小与形态变化进行分化阶段判断;
微生物检测:应用于酵母、细菌群体计数与活性监测;
质量控制:在生物制药过程中用于细胞生长状态监控与批次验证。


